İskelet Displazisi Olan Hastalarda Çok Metotlu Dizileme Sonuçlarının Retrospektif Analizi
PDF
Atıf
Paylaş
Talep
Özgün Araştırma
CİLT: 37 SAYI: 1
P: 92 - 99
Ocak 2026

İskelet Displazisi Olan Hastalarda Çok Metotlu Dizileme Sonuçlarının Retrospektif Analizi

Gazi Med J 2026;37(1):92-99
Bilgi mevcut değil.
Bilgi mevcut değil
Alındığı Tarih: 16.12.2025
Kabul Tarihi: 25.12.2025
Online Tarih: 19.01.2026
Yayın Tarihi: 19.01.2026
PDF
Atıf
Paylaş
Talep

ÖZ

Amaç

İskelet displazisi, iskelet sisteminin gelişimini etkileyen heterojen hastalık gurubudur. Kompleks doğası nedeniyle, klinik ya da radyolojik değerlendirmeler bilgi verici olabilir; ancak moleküler yaklaşımlar ayırıcı tanı ve alt tiplerin belirlenmesi açısından daha etkilidir. Kohort çalışmaları ilişkili genleri ve varyantları aydınlatmış olsa da bu konuda halen çalışmaya ihtiyaç duyulmaktadır. Sunulan çalışma bir Türk kohortunda genotip-fenotip ilişkisini araştırmayı amaçlamaktadır.

Yöntemler

Sunulan çalışmaya 36 hasta dahil edilmiştir. Hastalar, Genetik İskelet Hastalıklarının Nozolojisi, 2023’e göre gruplandırılmıştır. Genetik tanı algoritmasına uygun olarak hastalara Sanger dizileme, hedefli gen paneli, klinik ekzom dizileme ya da tüm ekzom dizileme çalışılmıştır. Tespit edilen spesifik varyantlar için mevcut literatür derlenmiştir.

Bulgular

Katılımcılar arasında kadın sayısı (%63,9), erken sayısından (%36,1) daha fazladır. Kritik olarak, 16 hastanın (%45,7) ebeveynleri akrabadır. Otuz altı hastanın 29’unda patojenik ya da olası patojenik varyant tespit edilmiştir. Dizileme metoduna bağlı olarak tanı verimi %80’dir. Nozolojiye göre moleküler tanısı en yüksek olan gruplar, grup 2, tip II kolajen hastalıkları (5 hastada COL2A1 varyantları) ve grup 34, kraniosinostozlu sendromlar (5 hastada FGFR2, FGFR3, TWIST1 ya da SMO varyantları) şeklindedir.

Sonuç

Sunulan çalışma, bir Türk kohortunda, iskelet displazisinde genetik ve fenotipik varyasyonları vurgulamıştır. Elde edilen bulguların mevcut literatüre katkı sunması ve hasta takibi ve değerlendirmesi açısından klinisyenleri yönlendirmesi beklenmektedir.

Anahtar Kelimeler:
İskelet displazisi, moleküler tanı, dizileme

Kaynaklar

1
Cui Y, Zhao H, Liu Z, Liu C, Luan J, Zhou X, et al. A systematic review of genetic skeletal disorders reported in Chinese biomedical journals between 1978 and 2012. Orphanet J Rare Dis. 2012; 7: 55.
2
Krakow D. Skeletal dysplasias. Clin Perinatol. 2015; 42: 301-19.
3
Jurcă MC, Jurcă SI, Mirodot F, Bercea B, Severin EM, Bembea M, et al. Changes in skeletal dysplasia nosology. Rom J Morphol Embryol. 2021; 62: 689–96.
4
Handa A, Nishimura G, Zhan MX, Bennett DL, El-Khoury GY. A primer on skeletal dysplasias. Jpn J Radiol. 2022; 40: 245–61.
5
Guasto A, Cormier-Daire V. Signaling pathways in bone development and their related skeletal dysplasia. Int J Mol Sci. 2021; 22: 4321.
6
Mortier GR, Cohn DH, Cormier-Daire V, Hall C, Krakow D, Mundlos S, et al. Nosology and classification of genetic skeletal disorders: 2019 revision. Am J Med Genet A. 2019; 179: 2393–419.
7
Unger S, Ferreira CR, Mortier GR, Ali H, Bertola DR, Calder A, et al. Nosology of genetic skeletal disorders: 2023 revision. Am J Med Genet A. 2023; 191: 1164–209.
8
Lazarus S, Zankl A, Duncan EL. Next-generation sequencing: a frameshift in skeletal dysplasia gene discovery. Osteoporos Int. 2014; 25: 407–22.
9
Geister KA, Camper SA. Advances in Skeletal Dysplasia Genetics. Annu Rev Genomics Hum Genet. 2015; 16: 199–227.
10
Bae JS, Kim NK, Lee C, Kim SC, Lee HR, Song HR, et al. Comprehensive genetic exploration of skeletal dysplasia using targeted exome sequencing. Genet Med. 2016; 18: 563–9.
11
Desvignes JP, Bartoli M, Delague V, Krahn M, Miltgen M, Béroud C, et al. VarAFT: a variant annotation and filtration system for human next generation sequencing data. Nucleic Acids Res. 2018; 46: W545-W553.
12
Richards S, Aziz N, Bale S, Bick D, Das S, Gastier-Foster J, et al. Standards and guidelines for the interpretation of sequence variants: a joint consensus recommendation of the American College of Medical Genetics and Genomics and the Association for Molecular Pathology. Genet Med. 2015; 17: 405–24.
13
Najjar D, Maver A, Peterlin A, Jaklič H, Peterlin B. Unraveling the complexity of skeletal dysplasias in the national health system. Front Endocrinol (Lausanne). 2025; 16: 1523737.
14
Uttarilli A, Shah H, Bhavani GS, Upadhyai P, Shukla A, Girisha KM. Phenotyping and genotyping of skeletal dysplasias: Evolution of a center and a decade of experience in India. Bone. 2019; 120: 204–11.
15
Kim SJ, Lee SM, Choi JM, Jang JH, Kim HG, Kim JT, et al. Genetic analysis using a next generation sequencing-based gene panel in patients with skeletal dysplasia: a single-center experience. Front Genet. 2021; 12: 670608.
16
Sentchordi-Montané L, Benito-Sanz S, Aza-Carmona M, Díaz-González F, Modamio-Høybjør S, de la Torre C, et al. High prevalence of variants in skeletal dysplasia associated genes in individuals with short stature and minor skeletal anomalies. Eur J Endocrinol. 2021; 185: 691–705.
17
Scocchia A, Kangas-Kontio T, Irving M, Hero M, Saarinen I, Pelttari L, et al. Diagnostic utility of next-generation sequencing-based panel testing in 543 patients with suspected skeletal dysplasia. Orphanet J Rare Dis. 2021; 16: 412.
18
Silveira KC, Kanazawa TY, Silveira C, Lacarrubba-Flores MDJ, Carvalho BS, Cavalcanti DP. Molecular diagnosis in a cohort of 114 patients with rare skeletal dysplasias. Am J Med Genet C Semin Med Genet. 2021; 187: 396–408.
19
Tüysüz B, Kasap B, Sarıtaş M, Alkaya DU, Bozlak S, Kıykım A, et al. Natural history and genetic spectrum of the Turkish metaphyseal dysplasia cohort, including rare types caused by biallelic COL10A1, COL2A1, and LBR variants. Bone. 2023; 167: 116614.
20
Taşdemir Ü, Eyisoy ÖG, Gezer M, Karaman A, Demirci O. Molecular analysis of 31 cases with fetal skeletal dysplasia. J Perinat Med. 2024; 52: 886–95.
21
Gregersen PA, Savarirayan R. Type II Collagen Disorders Overview. 2019 Apr 25 [updated 2024 Oct 24]. In: Adam MP, Bick S, Mirzaa GM, Pagon RA, Wallace SE, Amemiya A, editors. GeneReviews® [Internet]. Seattle (WA): University of Washington, Seattle; 1993–2025.
22
Richards AJ, Snead MP. Molecular basis of pathogenic variants in the fibrillar collagens. Genes (Basel). 2022; 13: 1199.
23
Nishimura G, Haga N, Kitoh H, Tanaka Y, Sonoda T, Kitamura M, et al. The phenotypic spectrum of COL2A1 mutations. Hum Mutat. 2005; 26: 36–43.
24
Wu K, Li Z, Zhu Y, Wang X, Chen G, Hou Z, et al. Discovery of sensorineural hearing loss and ossicle deformity in a Chinese Li nationality family with spondyloepiphyseal dysplasia congenita caused by p.G504S mutation of COL2A1. BMC Med Genomics. 2021; 14: 170.
25
Terhal PA, Nievelstein RJ, Verver EJ, Topsakal V, van Dommelen P, Hoornaert K, et al. A study of the clinical and radiological features in a cohort of 93 patients with a COL2A1 mutation causing spondyloepiphyseal dysplasia congenita or a related phenotype. Am J Med Genet A. 2015; 167A: 461–75.
26
Twigg SRF, Hufnagel RB, Miller KA, Zhou Y, McGowan SJ, Taylor J, et al. A recurrent mosaic mutation in SMO, encoding the hedgehog signal transducer smoothened, is the major cause of curry-jones syndrome. Am J Hum Genet. 2016; 98: 1256–65.
27
Iida A, Simsek-Kiper PÖ, Mizumoto S, Hoshino T, Elcioglu N, Horemuzova E, et al. Clinical and radiographic features of the autosomal recessive form of brachyolmia caused by PAPSS2 mutations. Hum Mutat. 2013; 34: 1381–6.
28
Ashikov A, Abu Bakar N, Wen XY, Niemeijer M, Rodrigues Pinto Osorio G, Brand-Arzamendi K, et al. Integrating glycomics and genomics uncovers SLC10A7 as essential factor for bone mineralization by regulating post-Golgi protein transport and glycosylation. Hum Mol Genet. 2018; 27: 3029–45.
29
Dubail J, Huber C, Chantepie S, Sonntag S, Tüysüz B, Mihci E, et al. SLC10A7 mutations cause a skeletal dysplasia with amelogenesis imperfecta mediated by GAG biosynthesis defects. Nat Commun. 2018; 9: 3087.
30
Tzschach A, Ramel C, Kron A, Seipel B, Wüster C, Cordes U, et al. Hypergonadotropic hypogonadism in a patient with inv ins (2;4). Int J Androl. 2009; 32: 226–30.
31
Le Goff C, Mahaut C, Wang LW, Allali S, Abhyankar A, Jensen S, et al. Mutations in the TGFβ binding-protein-like domain 5 of FBN1 are responsible for acromicric and geleophysic dysplasias. Am J Hum Genet. 2011; 89: 7–14.
32
Hasegawa K, Numakura C, Tanaka H, Furujo M, Kubo T, Higuchi Y, et al. Three cases of Japanese acromicric/geleophysic dysplasia with FBN1 mutations: a comparison of clinical and radiological features. J Pediatr Endocrinol Metab. 2017; 30: 117–21.